听力丧失是最常见的感官障碍之一，影响着很多人。根据世卫组织公布的《世界听力报告》，现有超15亿人患有不同程度的听力损失，到2050年，患听力损失的人数将近25亿。据统计，大约50%的先天性听力损失与遗传因素有关，目前临床上的治疗方案主要为佩戴助听器或植入人工耳蜗，但此类方法没有基于病因学从根本上治愈听力损伤。因此，治疗听力损失需要更好的替代疗法。随着基因治疗的蓬勃发展，基于病毒载体的基因疗法成为治疗遗传性听力损失的新热门赛道。
复旦大学附属眼耳鼻喉科医院舒易来主任长期致力于研究耳聋基因治疗及临床转化，在显性和隐性遗传性耳聋、后天性耳聋的防治上取得了诸多进展，为耳聋的治疗开辟了新方向。
2021年6月，复旦大学附属眼耳鼻喉科医院舒易来主任、李华伟教授与中国农业科学院（深圳）农业基因组研究所左二伟研究员等团队合作在Molecular Therapy上发表题为Gene editing in a Myo6 semi-dominant mouse model rescues auditory function的研究论文[1]。该研究以模拟显性感音神经性耳聋小鼠模型（Myo6WT/C442Y鼠）为对象，借助AAV-PHP.eB基因治疗递送载体，搭载CRISPR/Cas9基因编辑系统（AAV-PHP.eB-SaCas9-KKH-Myo6-g2），高效转染内耳毛细胞，实现了在体特异性敲除Myo6C442Y等位基因，并在长达5个月的时间内观察到了听觉功能的恢复。这也是国际上第一个利用CRISPR/Cas9技术针对Myo6基因突变导致的遗传性耳聋进行治疗，并获得成功的研究。为遗传性耳聋基因治疗临床转化提供了坚实的科学依据。
| 病菌商品 | AAV-PHP.eB-SaCas9-KKH-Myo6-g2 |
| 实验设计软体动物 |
P0-2 Myo6WT/C442Y鼠 |
| 滴注模式 | RWM |
| 细菌感染关键部位 | 内耳毛细管胞 |
| 木马病毒摄入量 | 共0.5μL |
在遗传性耳聋中，隐性遗传占大多数。2022年2月，三位科学家又合作在Cell Research在线发表题为“Treatment of autosomal recessive hearing loss via in vivo CRISPR/Cas9-mediated optimized homology-directed repair in mice”的研究论文[2]。该研究以AAV-PHP.eB和AAV9双载体作为高效的基因治疗递送载体，转染Klhl18lowf鼠耳蜗内毛细胞，成功纠正了Klhl18基因C>A点突变，持久改善了听觉功能。首次实现基于CRISPR/Cas9-HMEJ技术治疗隐性遗传性感音神经性聋成功的研究，为遗传性耳聋的精准治疗以及临床转化提供了强有力的科学证据。（阅读原文：）
| 疫情商品 | AAV9-SaCas9-KKH和AAV-PHP.eB-sgRNA-donor |
| 实验英文猎物 |
P1 Klhl18lowf鼠 |
| 注入形式 | RWM |
| 交叉感染的位置 | 耳蜗 |
| 宏病毒需求量 | 共0.5μL |
基于RNA靶向CRISPR/CasRx系统具有特异性识别和编辑RNA的能力。同年3月，复旦大学舒易来主任、李耕林研究员与中国农业大学胡晓湘教授合作发现基于CRISPR/CasRx编辑系统在治疗常染色体显性遗传性听力损失中的作用。研究以高效的基因治疗递送载体--AAV-PHP.eB递送特异性靶向和编辑RNA的CRISPR/CasRx系统至Bth鼠内耳中，Bth鼠为Tmc1基因突变的显性耳聋小鼠模型，借助CRISPR/CasRx系统敲低Tmc1Bth等位基因的转录本，有效改善了毛细胞和静纤毛束的形态，防止了进行性听力损失。该研究成果发表在Signal Transduction and Targeted Therapy 期刊，标题为：Preventing autosomal-dominant hearing loss in Bth mice with CRISPR/CasRx-based RNA editing[3]。
| 电脑病毒企业产品 | AAV-PHP.eB-CMV-CasRx-U6-sgRNA3 |
| 研究宠物 | P1-2 Bth鼠 |
| 注射器方试 | RWM |
| 感梁步位 | 内耳孔隙胞 |
| 类病毒储电量 | ~1.5μL（~5E+9vg） |
感音性耳聋有先天与后天之分，后天性耳聋是耳聋患者的重要部分，致聋原因主要包括耳毒性药物、噪音、老化、感染等因素，目前尚无可治疗的药物（突发性耳聋除外）。2022年4月，复旦大学附属眼耳鼻喉科医院舒易来主任、李华伟教授与陈兵教授团队借助CRISPR-CasRx的RNA编辑技术成功防治了耳毒性药物引起的后天性感音神经性耳聋。研究成果发表在Molecular Therapy-Nucleic Acids 杂志上，题为：Specific knockdown of Htra2 by CRISPR-CasRx prevents acquired sensorineural hearing loss in mice[4]。该研究基于前期研究成果，通过AAV- PHP.eB-RfCas13d-sgRNA3高效转染幼鼠内耳毛细胞，借助RfCas13d特异性靶向并高效切割RNA的特性，下调幼鼠内耳毛细胞中Htra2基因表达，显著提升了氨基糖甙类抗生素（aminoglycosides，AGs）暴露后小鼠耳蜗毛细胞的存活，并明显改善了后天性感音神经性耳聋小鼠的听觉功能。该研究创新性地以CRISPR-CasRx 基因编辑技术在小鼠模型中实现了高效敲降靶点RNA的目的，证明了CRISPR-CasRx系统在临床上防治后天性耳聋具有巨大的应用潜力。
| 细菌货品 | AAV-PHP.eB-CMV-RfCas13d-U6-sgRNA3 |
| 试验生物 | P1小鼠 |
| 针剂方式方法 | RWM |
| 传染器官 | 内耳孔隙胞 |
| 细菌的使用量 | 0.5μL（~5E+9vg） |
2022年6月，舒易来团队创新性构建Atoh1-GFP小鼠以准确检测CRISPR/Cas9系统在内耳毛细胞中的编辑效率。并借助AAV-PHP.eB-SaCas9-KKH-g3高效转染Kcnq4+/G229D幼鼠内耳，显著改善小鼠的听觉功能。该研究为精准评估CRISPR/Cas9在体内的编辑效率提供了方向，促进了CRISPR基因编辑系统在疾病治疗中的应用。该研究发表在Molecular Therapy-Nucleic Acids 杂志上，题为：Precise detection of CRISPR-Cas9 editing in hair cells in the treatment of autosomal dominant hearing loss[5]。
| 木马成品 | AAV-PHP.eB-SaCas9-KKH-g3 |
| 研究動物 | P1-2 转DNA鼠 |
| 接种方式方法 | RWM |
| 感梁布位 | 耳蜗 |
| 病原体需水量 | 0.5μL |
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对应论文提纲环节： [1] //doi.org/10.1016/j.ymthe.2021.06.015 [2] //doi.org/10.1038/s41422-022-00624-y [3] //doi.org/10.1038/s41392-022-00893-4 [4] //doi.org/10.1016/j.omtn.2022.04.014 [5] //doi.org/10.1016/j.omtn.2022.07.016业务咨询
